Repeat Expansions & Myotonic Dystrophy (REDs)
La thématique principale de l’équipe est centrée sur la Dystrophie Myotonique, une des maladies neuromusculaires les plus fréquentes chez l’adulte, et plus particulièrement sur la DM de type 1 (DM1) également appelée maladie de Steinert. La DM1 est caractérisée par une faiblesse et une atrophie musculaire progressive, une myotonie, des défauts de conduction cardiaque, une cataracte, des troubles endocriniens et gastro-intestinaux ainsi que des atteintes neurologiques. On distingue cinq formes de cette maladie multisystémique incluant les formes tardive, adulte, juvénile, infantile et congénitale. Actuellement, il n’y a pas de traitement pour cette maladie génétique mais diverses approches thérapeutiques sont en développement.
La DM1 est une maladie autosomique dominante causée par une expansion anormale de triplets CTGn (n>40) localisée dans la région 3’ non codante du gène DMPK. Le caractère instable de cette expansion de séquences CTG répétées se manifeste dans différents tissus tout au long de la vie du patient mais également entre générations successives, et représente la base moléculaire du phénomène d’anticipation observé dans cette maladie. La DM1 est une maladie à gain-de-fonction d’ARN. En effet, les transcrits DMPK mutés contenant des répétitions CUG pathologiques (ARN-CUGexp) sous retenus dans le noyau des cellules sous forme d’agrégats riboprotéiques (foci) et perturbent les fonctions de certaines protéines de liaison aux ARNs (RBPs). Notamment les foci séquestrent les RBPs de la famille MBNL impliquées dans le processus de maturation des ARNs. Ainsi, la perte fonctionnelle de MBNL conduit à des défauts d’épissage alternatif de certains ARN pré-messagers qui ont été associés à des symptômes comme ceux du CLCN1 à la myotonie, de INSR à la résistance à l’insuline, de BIN1 à la faiblesse musculaire, de DMD à l’altération de l’architecture des fibres musculaires et de SCN5A à des défauts de conduction cardiaque et du rythme. Cependant des mécanismes additionnels sont impliqués dans les processus physiopathologiques complexes de cette maladie qui affecte divers types cellulaires et de nombreux tissus.
L’équipe REDs a été créée en 2019 suite à la fusion des équipes de Geneviève Gourdon et de Denis Furling. Elle inclut également le groupe de Guillaume Bassez, neurologue qui coordonne le registre national de dystrophie myotonique (DM-Scope) et celui d’Arnaud Ferry qui s’intéresse à la physiologie musculaire et à l’exercice. L’objectif de cette nouvelle équipe est de synergiser les efforts afin d’accélérer la recherche translationnelle pour cette maladie neuromusculaire et de faire émerger des alternatives thérapeutiques pour les patients. Ainsi les compétences de l’équipe visent à faire une recherche intégrée autour de la DM1 allant des mécanismes fondamentaux de l’instabilité des expansions CTG, à la compréhension des mécanismes physiopathologiques à l’aide de modèles cellulaires et animaux, au développement et à l’évaluation d’approches thérapeutiques innovantes et enfin, à la mise en place d’essais pré-cliniques et cliniques pour cette maladie neuromusculaire.
Thèmes de recherche
Groupe Gourdon
- Mécanismes impliqués dans l’instabilité des triplets répétés dans les modèles cellulaires, murins et dans les familles DM1
- Conséquences moléculaires et physiopathologiques des expansions CTG à l’origine de l’atteinte du système nerveux central et dans la forme congénitale de la maladie.
- Tests précliniques chez la souris DM1 : phénotypes moléculaires et physiologiques du muscle et du SNC.
Groupe Furling
- Compréhension des mécanismes physiopathologies associés à l’expression d’ARN-CUGexp et impliqués dans les altérations de l’unité motrice et de la fonction musculaire mais également dans des atteintes non-musculaires (cardio-vasculaire…)
- Développement d’approches thérapeutiques innovantes pour la DM1, et évaluation à l’aide de modèles cellulaires et murins
Groupe Ferry
- Impact de maladie neuromusculaire sur la fonction musculaire et la performance (i.e., caractérisation de modèles murins). Effets de l’exercice.
- Evaluation d’approches thérapeutiques sur la fonction musculaire. Etude préclinique dans des modèles murins en collaboration avec la PTF d’évaluation de l’UMS28 (S. Morosan/M. Lemaitre).
- Physiologie intégrée du muscle squelettique
Groupe Bassez
- Caractérisation phénotypique et de l’histoire naturelle de la Dystrophie Myotonique
- Validation d’outils de mesure pour les essais cliniques
- Coordination de l’Observatoire Français des Dystrophies Myotoniques – DM-Scope –
Nom | Position | ORCID | Groupe |
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- Louison Lallemant, Sandra Braz, Anchel González-Barriga, Paul Magneron, Aurélien Cordier, et al.. Toxic CUG RNA repeats disrupt developmentally-regulated splicing in oligodendrocytes causing transient hypomyelination in a mouse model of myotonic dystrophy.. The European Meeting on Glial Cells in Health and Disease, Jul 2023, Berlin, France. ⟨hal-04005524⟩
- Alex Corscadden, Louison Lallemant, Hélène Benyamine, Jean-Christophe Comte, Aline Huguet-Lachon, et al.. Defects in mouse cortical glutamate uptake can be unveiled in vivo by a two-in-one quantitative microdialysis.. NeuroFrance, May 2023, Lyon, France. ⟨hal-04005564⟩
- Paul Magneron, Louison Lallemant, Luis Guillermo Correa Parra, Mário Gomes-Pereira, Geneviève Gourdon. Cytoskeleton abnormalities triggered by toxic CUG RNA repeats in DM1 astrocytes.. NeuroFrance, May 2023, Lyon20, France. ⟨hal-04005541⟩
- B Potier, Louison Lallemant, Sandrine Parrot, Aline Huguet-Lachon, Geneviève Gourdon, et al.. DM1 transgenic mice exhibit abnormal neurotransmitter homeostasis and synaptic plasticity in association with RNA mis-splicing in the hippocampus.. NeuroFrance, May 2023, Lyon, France. ⟨hal-04005556⟩
- Paul Magneron, Louison Lallemant, Luis Guillermo Correa Parra, Geneviève Gourdon, Mário Gomes-Pereira. Cytoskeleton abnormalities triggered by toxic CUG RNA repeats in DM1 astrocytes.. French Glial Cell Club, May 2023, Lyon, France. ⟨hal-04005531⟩
- Caroline Le Guiner, Thibaut Larcher, Aude Lafoux, Gilles Toumaniantz, Geneviève Gourdon, et al.. Characterization of the muscular and cardiac diseases of the DMSXL mouse model, a transgenic mouse model for Myotonic Dystrophy type 1. American Society of Gene and Cell Therapy, May 2023, Los Angeles, United States. ⟨hal-04005583⟩
- Mário Gomes-Pereira. Toxic RNA and glial cell pathology: deciphering brain dysfunction in myotonic dystrophy. 9th Molecular and Cell Biology Symposium, Feb 2023, Porto, Portugal. ⟨hal-04007409⟩
- Julie Tahraoui-Bories, Antoine Mérien, Anchel González-Barriga, Jeanne Lainé, Céline Leteur, et al.. MBNL‐dependent impaired development within the neuromuscular system in myotonic dystrophy type 1. Neuropathology and Applied Neurobiology, 2023, 49 (1), ⟨10.1111/nan.12876⟩. ⟨hal-03992575⟩
- Stéphanie Tomé. Long read sequencing in DM1. Workshop on Long read sequencing of expanded tandem repeats, Dec 2022, London, United Kingdom. ⟨hal-04004440⟩
- Tanya Stojkovic, Marion Masingue, Helène Turmel, Marianne Hezode-Arzel, Anthony Béhin, et al.. Diagnostic yield of a practical electrodiagnostic protocol discriminating between different congenital myasthenic syndromes. Neuromuscular Disorders, 2022, 32 (11-12), pp.870-878. ⟨10.1016/j.nmd.2022.10.001⟩. ⟨hal-03993811⟩